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此前，我们分享了m6A RNA甲基化研究的数据挖掘思路（点击查看详情），进而筛选出m6A修饰目标基因。
做完MeRIP-seq测序后，如果需要对分析结果中感兴趣的内容进行后期验证，则需要进行下游实验设计。m6A RNA甲基化修饰目标基因的进一步验证或后期试验包括以下6个方面：
（1）简单验证
A. 目标基因m6A甲基化的验证：MeRIP-RT-PCR
B. 检测目标基因的mRNA表达水平：RT-qPCR
C. 检测目标基因蛋白质表达水平：Western blot
（2）全局m6A甲基化干扰实验（非靶向），验证m6A甲基化书否真的影响目标基因表达和细胞功能
FB23-2给药后，大脑损伤组神经功能缺陷评分显著变差
（3）靶向目标基因的甲基化/去甲基化实验，检测某区域m6A修饰是否真的影响目标基因的表达
A. 目的基因m6A甲基化干扰细胞系的构建：荧光素酶活性分析实验（Luciferase activity assay）——构建含甲基化/未甲基化m6A位点的目标基因-荧光素酶表达质粒，转染细胞并表达。
B. 检测目标基因的m6A甲基化变化：MeRIP-qPCR
C. 检测荧光素酶报告基因的mRNA表达水平：RT-qPCR
D. 检测目标基因蛋白质表达水平：Western blot
E. 检测细胞功能受到的影响：免疫荧光显微观察、功能标志物测定... ...
用于验证目标基因上m6A甲基化功能的双荧光素酶报告系统
（4）研究目标基因的m6A甲基化如何影响目标基因表达
A. 检测m6A是否通过影响目标基因翻译而影响蛋白质水平：
Polysome profiling
Ribo-seq
通过对结合核糖体上的mRNA进行定量，分析目标基因的蛋白翻译效率
通过对结合核糖体上的mRNA进行定量，分析目标基因的蛋白翻译效率
Polysome Profiling方法举例：
siMETTL3/14对目标基因与与核糖体的结合造成影响，对内参基因GAPDH无影响。
B. 研究m6A是否通过调节mRNA的稳定性和降解而影响目标基因蛋白水平
研究m6A对目标基因mRNA水平的影响
RT-qPCR
RNA-seq
METTL3/14干扰后，采用RT-PCR和RNA-seq检测目标基因的mRNA水平是否收到影响
C. 研究m6A是否通过调控RNA的出核（nuclear export）而影响目标基因蛋白水平
裂解细胞，超速离心分离细胞核与细胞质，然后分别进行RT-PCR实验检测细胞核与细胞质中的mRNA水平
METTL3/14干扰后，采用RT-PCR检测目标基因在细胞核与细胞质中的mRNA水平是否受到影响
（5）m6A修饰目标基因的表达回复实验
A. writers的突变/敲降/敲除实验：
RT-PCR检测目标基因的mRNA水平变化
Western blot检测目标基因的蛋白水平变化
检测目标基因的功能
B. writers的突变/敲降/敲除后，目标基因的过表达回复实验：
检测各项表型指数、细胞增殖、分化的回复情况
METTL3敲除后，靶基因Ezh2的蛋白表达受到影响。而靶基因Ezh2过表达回复实验会消除METTL3敲除对细胞增殖分化的不利影响
（6）研究特定m6A Readers通过结合目标基因RNA而影响目标基因的蛋白表达
YTHDF1引入突变后，检测其假定靶基因的表达和与靶基因的结合是否受到影响
关于易基因RNA m6A甲基化测序(MeRIP-seq)技术
易基因MeRIP-seq技术利用m6A特异性抗体富集发生m6A修饰的RNA片段（包括mRNA、lncRNA等rRNA去除所有RNA），结合高通量测序，可以对RNA上的m6A修饰进行定位与定量，总RNA起始量可降低至10μg，最低仅需1μg总RNA。广泛应用于组织发育、干细胞自我更新和分化、热休克或DNA损伤应答、癌症发生与发展、药物应答等研究领域；可应用于动物、植物、细胞及组织的m6A检测。
大样本量m6A-QTL性状关联分析，传统MeRIP单个样品价格高，通常难以承担。易基因开发建立MeRIP-seq2技术，显著提成IP平行性，实现不同样本间相对定量，降低检测成本。
易基因提供适用于不同科研需求的MeRIP技术：
技术优势：
研究方向：
m6A甲基化目前主要运用在分子机制的理论性研究
环境暴露与响应：污染、抗逆、生活方式
易基因科技提供全面的RNA甲基化研究整体解决方案，技术详情了解请致电易基因0755-28317900。
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